研究背景
RNA修饰是表观遗传中影响转录后调控的关键过程,例如RNA m6A修饰的研究正进行得如火如荼。除此之外,人们也发现包括ac4C在内的多种RNA修饰均可参与转录后调控过程。前期研究发现,RNA腺嘌呤和胞嘧啶上甲基化修饰是细胞、病毒mRNA的关键调节因子,但其他修饰——如ac4C——是否发生在宿主及病毒中,并参与调控病毒的侵染过程还不得而知。
本文所关注的问题,就是ac4C乙酰化修饰是否存在于HIV-1病毒上;如果存在,这一修饰是否在HIV-1病毒感染过程中起到某种调控作用。
1. HIV-1病毒上存在ac4C修饰
为了了解HIV-1病毒基因组RNA上是否存在ac4C修饰,作者先进行了acRIP-seq,发现HIV-1病毒基因组RNA上存在多处修饰(下图A、B)。
此前研究表明,ac4C修饰是由乙酰转移酶NAT10介导发生的,因此作者通过CRISPR/Cas技术敲低了NAT10,acRIP-seq检测发现,NAT10敲低后,HIV-1上ac4C修饰的确减少了(下图C)。
此外,作者还通过PAR-CLIP检测了NAT10-FLAG和GFP-FLAG(阴性对照)过表达细胞中蛋白NAT10所结合的RNA,而NAT10-FLAG中NAT10与病毒转录本结合的区域,同HIV-1病毒具ac4C修饰的区域一致(下图D)。
上述结果表明,HIV-1的RNA上的确具有ac4C修饰,且这一修饰由NAT10介导。
2. HIV-1上的ac4C修饰可促进病毒复制
在确定了HIV-1病毒存在ac4C修饰后,这一修饰是否能促进病毒的感染过程呢?如果NAT10介导的ac4C修饰可以促进HIV-1病毒转录,那么NAT10的敲低或许能抑制HIV-1转录。基于上述假设,作者检测了病毒Gag蛋白的表达情况:NAT10敲低后,病毒Gag蛋白的表达显著减少(下图A),荧光素酶、RT-qPCR等实验结果均与之一致,NAT10敲低细胞中的荧光素水平、病毒RNA表达量均显著降低(下图B, C),表明NAT10表达减少会显著降低HIV-1病毒的基因表达。
作者也利用NAT10抑制剂——Remodelin进行了探究,发现在正常细胞中,添加该抑制剂后可降低70%的HIV-1复制,而对于NAT10敲低细胞中的病毒复制无显著作用(下图D)。这也进一步证实了NAT10是HIV-1病毒的辅因子。
由于NAT10表达降低导致HIV-1复制减少,作者推断NAT10的乙酰转移酶活性可能是HIV-1复制的限制因素。因此,作者分别构建了NAT10和丧失乙酰转移酶功能的NAT10(K290A、G641E)的荧光素酶报告系统(下图E),结果显示乙酰转移酶功能的丧失并不影响NAT10的蛋白表达(下图G),但影响了病毒报告系统中的荧光素表达(下图F),表明NAT10的乙酰转移能力对HIV-1病毒的复制具有重要作用。
3. NAT10对HIV-1病毒转录本的影响
为了研究NAT10介导的ac4C修饰在哪一个阶段促进HIV-1复制,作者进行了HIV-1单一周期复制实验,在用逆转录酶抑制剂Nevirapine处理后,NAT10敲低细胞中HIV-1病毒的Gag蛋白表达、RNA表达量均远低于对照组(下图A、B),暗示NAT10可能从转录水平影响HIV-1病毒,进而促进病毒复制。
此后作者通过亚细胞定位、qPCR等实验证明,NAT10敲低既不影响HIV-1病毒的DNA量(下图C),也不影响HIV-1转录本的亚细胞定位(下图D),表明ac4C修饰程度降低不影响病毒进入宿主细胞、逆转录、整合及其亚细胞定位等过程。
但是,NAT10敲低导致的ac4C修饰程度降低,使得病毒RNA稳定性大幅降低(下图E)。表明NAT10介导的ac4C修饰可通过维持HIV-1病毒转录本稳定性,从而促进病毒相关基因表达,帮助病毒的复制。
4. 病毒基因组RNA上的ac4C修饰有助于病毒相关基因的表达
此前研究发现,ac4C除了通过影响转录本稳定性以外,还可以提高CDS区翻译效率。是否只有发生在CDS中的ac4C修饰可以顺式作用的方式影响mRNA稳定性呢?作者对HIV-1 env 基因3’UTR的ac4C位点进行了突变(C-U,下图A),之后用突变体病毒转染WT 293T细胞,检测病毒Gag蛋白表达量。结果显示,ac4C修饰位点突变后,Gag蛋白表达量下调(下图B),且病毒的释放量也显著降低(下图C)。这说明3’UTR的ac4C修饰位点的也调控了HIV-1病毒的Gag蛋白表达。
综上,文章得到一个简要模型:HIV-1病毒可借助宿主体内的乙酰化转移酶NAT10在其基因组RNA相应区域进行ac4C修饰,而这一修饰可维持病毒mRNA的稳定性,从而上调病毒蛋白的表达量,促进病毒的复制。而当NAT10乙酰转移功能缺失或3’UTR ac4C位点突变后,病毒的转录本稳定性下降,从而抑制了病毒的复制。
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参考文献:doi:10.1016/j.chom.2020.05.011